Nueva pueba diagnóstica para anticuerpos en Miastenia Gravis basado en un sistema
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de micropartículas fluorescentes libre de células
Introducción
fuentes diferentes de receptor fueron evaluadas: nAChR
La miastenia gravis (MG) es una enfermedad autoinmune del órgano eléctrico de Torpedo califórnica (Tc, Aquatic Re-
mediada por autoanticuerpos patogénicos (ACRA) dirigidos search Consultants) purificado por cromatografía de afini-
contra el receptor acetilcolina nicotínico (nAChR), la cual se ma- dad [9,10]; y nAChR de un extracto de músculo bovino (Bm)
nifiesta clínicamente con debilidad muscular [1,2]. La técnica purificado por cromatografía de intercambio iónico [11,12].
actual de referencia para detectar ACRA es el radioinmunoensa-
Para la preparación de las micropartículas sensibilizadas
yo (RIA), un método costoso y nocivo para el medioambiente. se mezclaron 1,4 μl de micropartículas de poliestireno (1
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Se han realizado intentos para sustituir al RIA con ensayos de cm o 2 x 10 partículas) con 2,3 μl de nAChR de Tc (0,6 μg)
inmunoabsorción ligado a enzimas (ELISA), pero, hasta el mo- o 1 μl de Bm (0,7 μg), en un volumen final de 20 μl en buffer
mento, no se ha podido alcanzar la alta sensibilidad que posee isotónico salino (IBS) (2,3 mM NaH PO ; 14,2 mM Na HPO ;
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el RIA [3,4].
140 mM NaCl; 3,8 mM KCl), y se incubaron durante 16 hs a
El objetivo principal de este trabajo fue desarrollar un méto- 4 °C en un agitador orbital. La mezcla luego fue centrifugada
do alternativo, simple y ecológicamente amigable, para la me- a 5.000 x g por 10 min y el sobrenadante fue descartado.
dición de ACRA. La metodología se basa en la inmovilización del El pellet fue resuspendido en 20 μl de IBS-BSA (0,5 % p/v
nAChR en partículas de poliestireno, su interacción con sondas seroalbúmina bovina en IBS) y la suspensión incubada por
fluorescentes y su detección por citometría de flujo.
1 h a temperatura ambiente en un agitador orbital, con el
El nAChR es un canal iónico pentamérico regulado por ligando objetivo de bloquear todos los sitios libres no sensibilizados
con dos isoformas: la neuronal y la muscular. La última está con- con el receptor. La preparación fue centrifugada a 5.000 x
formada por tres cadenas diferentes (β, δ, γo ε) y dos cadenas g por 10 min nuevamente, el sobrenadante fue descartado
α idénticas, las cuales poseen el sitio de unión a los ligandos y el pellet resuspendido en 20 μl de IBS (resultando en una
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[
5]. El ligando natural del receptor es la acetilcolina, pero las suspensión de 1 x 10 micropartículas-nAChR por μl). La
subunidades alfa pueden también unir antagonistas, como la suspensión se almacenó a 4 °C hasta su uso.
neurotoxina altamente específica derivada de un veneno de ví-
bora, denominada α-bungarotoxina (BTX) [6,7]. Los pacientes Microscopía de Fluorescencia
con MG poseen autoanticuerpos anti-receptor de acetilcolina
ACRA) que son los marcadores serológicos de la enfermedad dos intensamente y secados [13]. Luego los mismos fue-
1]. Existen tres tipos de ACRA: de unión, bloqueantes y modula- ron recubiertos con una solución de polilisina (0,1 mg/mL)
Cubreobjetos de vidrio de 15 mm No. 1,5 fueron limpia-
(
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dores. Los primeros pueden unirse a cualquier sitio del receptor, por 5 min a temperatura ambiente y el exceso de solución
los segundos se unen al sitio de unión a ligandos en la interface se dejó escurrir y secar totalmente.
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de la subunidad α con una subunidad no-α, y el tercer tipo no
Las micropartículas (1x10 ) sensibilizadas con nAChR de
sólo es capaz de unirse al nAChR, sino que además desencade- Tc o músculo bovino respectivamente, fueron colocadas so-
na su internalización y reciclado [8]. bre los cubreobjetos recubiertos con polilisina, permitiendo
El objetivo a largo plazo de este desarrollo es poder detectar su inmovilización durante 16 hs a 4 °C. Todas las incubacio-
de manera simultánea y en un mismo ensayo los ACRA de unión nes fueron realizadas en cámara húmeda. Los cubreobjetos
y bloqueantes, utilizando sondas fluorescentes con diferente fueron luego lavados e incubados con los siguientes ligan-
longitud de onda de emisión para distinguirlos.
dos fluorescentes por 1h a temperatura ambiente: i) α-BTX-
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AlexaFluor (1 μM, Invitrogen), ii) α-BTX-AlexaFluor (1
μM, Invitrogen) y iii) un suero ACRA positivo de un paciente
diagnosticado con MG, como anticuerpo primario (suero A,
Materiales y Métodos
Pacientes
Las muestras de suero de pacientes y de voluntarios 1:100, valor ACRA por RIA 3,71 nmoles/l). En el último caso
sanos se obtuvieron del Servicio de Neuroinmunología del fueron realizados dos lavados con buffer fosfato salino
Hospital Ramos Mejía, Consultorio de Miastenia Gravis, Bue- (PBS) antes del agregado del anticuerpo secundario anti-
nos Aires, Argentina. Todos los estudios se llevaron a cabo Igs humanas-FITC (1:200, Bethyl), con 1 h de incubación a
bajo un protocolo aprobado por el Comité de Ética de dicho temperatura ambiente en oscuridad. Luego de dos lavados
Hospital y todas las muestras se obtuvieron con un consen- más con PBS. Los cubreobjetos se montaron en cámaras de
timiento informado firmado por los individuos involucrados. perfusión especialmente diseñadas, se agregó PBS y final-
El estudio se llevó a cabo de acuerdo con los estándares mente la fluorescencia fue observada en un microscopio
éticos declarados en el Código de Ética de la Declaración de de epifluorescencia hecho a medida. Este microscopio fue
Helsinki de 1964.
construido por uno de los grupos de trabajo (F.J. Barrantes),
y funciona actualmente en el laboratorio de Neurobiología
Molecular a su cargo. Dicho microscopio, el primero de su
Sensibilización de micropartículas
El primer paso del procedimiento de esta nueva técnica tipo en el país, opera en epifluorescencia de campo ancho,
analítica consistió en recubrir (sensibilizar) la superficie de microscopía estocástica de molécula única (STORM) y de
micropartículas de poliestireno de 4 μm (Spherotech, Inc) fotoactivación (PALM) en super-resolución. Las imágenes
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con el nAChR (70 μg / 100 cm de micropartículas). Dos fueron adquiridas utilizando un objetivo de inmersión 100
ByPC 2018;82(3):12-17.